Ключові слова
мікрофлора кон’юнктиви
чутливість до антибіотиків і антисептиків
Як цитувати
Анотація
Вступ. У розвитку періопераційних інфекційних ускладнень у офтальмологічній практиці приймає участь умовно-патогенна мікрофлора, яка у нормі вегетує на слизовій кон’юнктиви. При дослідженні вмісту кон’юнктивального мішка здорових людей культуральним методом найчастіше у невеликій кількості виділяють коагулазонегативних стафілококів, які завжди присутні на шкірі повік. Бактерії цього роду належать до умовно-патогенних мікроорганізмів, оскільки при механічному, хімічному чи термічному пошкодженні шкіри чи слизових беруть активну участь у розвитку запальної реакції.
Мета. Метою роботи було визначити профілактичну та терапевтичну ефективність широко вживаних у офтальмології протимікробних препаратів шляхом дослідження чутливості до них коагулазонегативних стафілококів, виділених з кон’юнктивального вмісту.
Матеріали та методи. Проведено бактеріологічне дослідження кон’юнктивального вмісту 20 здорових осіб та 10 осіб з ознаками посттравматичного кон’юнктивіту, виділено 17 штамів S. epidermidis.
Результати. Істотних відмінностей у рівні чутливості до досліджених препаратів штамів S. epidermidis, ізольованих з поверхні здорової кон’юнктиви, у порівнянні зі штамами, виділеними із пошкодженої слизової, не встановлено. І ті, і інші були високорезистентними до найбільш давно вживаних препаратів сульфацилу натрію та левоміцетину. Середній показник МІК тобраміцину для ізолятів, виділених з неушкодженої кон’юнктиви, дорівнював 8,3±3,4 мкг/мл і був значно нижчим, ніж у антисептика мірамістину (20,8±4,2 мкг/мл). Отримані показники протистафілококової активності декаметоксину дозволяють припустити високу профілактичну та терапевтичну активність очних крапель препарату. Адже, концентрація антисептика у очних краплях 200 мкг/мл, що у 20 разів більше, ніж самий високий визначений показник МБцК для коагулазонегативних стафілококів.
Висновки. Результати дослідження чутливості отриманих ізолятів до протимікробних засобів показали низький рівень ефективності сульфацилу натрію та левоміцетину, сумнівну – левофлоксацину та мірамістину, високий рівень протистафілококової активності декаметоксину і тобраміцину.
Посилання
Gomes, J. Á. P., Frizon, L., & Demeda, V. F. (2020). Ocular Surface Microbiome in Health and Disease. Asia-Pacific journal of ophthalmology (Philadelphia, Pa.), 9(6), 505–511. https://doi.org/10.1097/APO.0000000000000330
Petrillo, F., Pignataro, D., Lavano, M. A., Santella, B., Folliero, V., Zannella, C., Astarita, C., Gagliano, C., Franci, G., Avitabile, T., & Galdiero, M. (2020). Current Evidence on the Ocular Surface Microbiota and Related Diseases. Microorganisms, 8(7), 1033. https://doi.org/10.3390/microorganisms8071033
Kugadas, A., Wright, Q., Geddes-McAlister, J., & Gadjeva, M. (2017). Role of Microbiota in Strengthening Ocular Mucosal Barrier Function Through Secretory IgA. Investigative ophthalmology & visual science, 58(11), 4593–4600. https://doi.org/10.1167/iovs.17-22119
Huang, Y., Yang, B., & Li, W. (2016). Defining the normal core microbiome of conjunctival microbial communities. Clinical microbiology and infection : the official publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, 22(7), 643.e7–643.e12. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2016.04.008
Maier, P., Betancor, P. K., & Reinhard, T. (2022). Contact Lens-Associated Keratitis-an Often Underestimated Risk. Deutsches Arzteblatt international, 119(40), 669–674. https://doi.org/10.3238/arztebl.m2022.0281
Ting, D. S. J., Ho, C. S., Deshmukh, R., Said, D. G., & Dua, H. S. (2021). Correction to: Infectious keratitis: an update on epidemiology, causative microorganisms, risk factors, and antimicrobial resistance. Eye (London, England), 35(10), 2908. https://doi.org/10.1038/s41433-021-01568-0
WHO Bacterial Priority Pathogens List, 2024: bacterial pathogens of public health importance to guide research, development and strategies to prevent and control antimicrobial resistance. Geneva: World Health Organization; 2024. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO. https://www.who.int/publications/i/item/9789240093461.
Shelkovaia N.H., Prokopets V.P. Metodyka kilkisnoho doslidzhennia vmistu bakterii u klinichnykh materialakh, shcho vidibrani za dopomohoiu vatnoho tampon [The method of quantitative research of the content of bacteria in clinical materials selected with the help of a cotton swab]. Zbirnyk naukovykh prats spivrobitnykiv KMAPO.- Vyp. 17.- K. 2.- Kyiv, 2008.- S. 698-702.
Pro zatverdzhennia metodychnykh vkazivok «Vyznachennia chutlyvosti mikroorhanizmiv do antybakterialnykh preparativ»: nakaz No 167 vid 05.04.2007 r. [Pro zatverdzhennia metodychnykh vkazivok «Vyznachennia chutlyvosti mikroorhanizmiv do antybakterialnykh preparativ»: nakaz No. 167 vid 04.05.2007 r.]. Available from: http://mozdocs.kiev.ua/view.php?id=6958/
Kang, Y., Tian, L., Gu, X., Chen, Y., Ma, X., Lin, S., Li, Z., Lou, Y., & Zheng, M. (2022). Characterization of the Ocular Surface Microbiome in Keratitis Patients after Repeated Ophthalmic Antibiotic Exposure. Microbiology spectrum, 10(2), e0216221. https://doi.org/10.1128/spectrum.02162-21
Hotta, F., Eguchi, H., Kuwahara, T., Nakayama-Imaohji, H., Shimomura, Y., & Kusaka, S. (2023). Disturbances in the ocular surface microbiome by perioperative antimicrobial eye drops. Frontiers in cellular and infection microbiology, 13, 1172345. https://doi.org/10.3389/fcimb.2023.1172345
Willems, R. J., Hanage, W. P., Bessen, D. E., & Feil, E. J. (2011). Population biology of Gram-positive pathogens: high-risk clones for dissemination of antibiotic resistance. FEMS microbiology reviews, 35(5), 872–900. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2011.00284.x
Brown, N. M., Goodman, A. L., Horner, C., Jenkins, A., & Brown, E. M. (2021). Treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA): updated guidelines from the UK. JAC-antimicrobial resistance, 3(1), dlaa114. https://doi.org/10.1093/jacamr/dlaa114
Lin, L., Duan, F., Yang, Y., Lou, B., Liang, L., & Lin, X. (2019). Nine-year analysis of isolated pathogens and antibiotic susceptibilities of microbial keratitis from a large referral eye center in southern China. Infection and drug resistance, 12, 1295–1302. https://doi.org/10.2147/IDR.S206831
https://www.eucast.org/eucastguidancedocuments.
Marangon, F. B., Miller, D., Muallem, M. S., Romano, A. C., & Alfonso, E. C. (2004). Ciprofloxacin and levofloxacin resistance among methicillin-sensitive Staphylococcus aureus isolates from keratitis and conjunctivitis. American journal of ophthalmology, 137(3), 453–458. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2003.10.026.
Chang, V. S., Dhaliwal, D. K., Raju, L., & Kowalski, R. P. (2015). Antibiotic Resistance in the Treatment of Staphylococcus aureus Keratitis: a 20-Year Review. Cornea, 34(6), 698–703. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000431.
Schmitz, F. J., Fluit, A. C., Gondolf, M., Beyrau, R., Lindenlauf, E., Verhoef, J., Heinz, H. P., & Jones, M. E. (1999). The prevalence of aminoglycoside resistance and corresponding resistance genes in clinical isolates of staphylococci from 19 European hospitals. The Journal of antimicrobial chemotherapy, 43(2), 253–259..
Rutala WA, Weber DJ. (2008). Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities, Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). Atlanta, GA, USA: CDC. https://www.cdc.gov /infectioncontrol/guidelines/disinfection/.
Kovalchuk, V., Vovk, I., Kondratyuk, V., Palii, D., Fomina. (2024). Characteristics of disinfectants activity against multidrug-resistant clinical isolates. Acta Biomedica, 95(1), e2024014. DOI: 10.23750/abm.v95i1.14785.
Denysko, T. V., Nazarchuk, O. A., Gruzevskyi, O., Bahniuk, N. À., Dmytriiev, D. V., Chornopyschuk, R. M., & Bebyk, V. V. (2022). In vitro evaluation of the antimicrobial activity of antiseptics against clinical Acinetobacter baumannii strains isolated from combat wounds. Frontiers in microbiology, 13, 932467. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.932467
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.